【细胞传代】

当细胞汇合度达到80%-90%，即可传代培养。

收集细胞：贴壁细胞可以参考以下方法1、吸去培养液，加入不含钙镁的PBS，轻轻润洗瓶底1-2次，吸弃PBS；2、加入0.25%胰酶-EDTA消化液（T25瓶1-2mL，T75瓶2-3mL），铺匀瓶底放入培养箱中消化1-2min；（部分细胞贴壁较牢，可采用分步消化：将消化下来的细胞转移至离心管终止，在培养瓶中加入胰酶继续消化，直至大部分细胞脱落）3、倒置显微镜下观察大部分细胞变圆脱落，迅速加入完全培养基终止消化，完培与胰酶比例为2:1；4、轻轻吹打细胞后吸出转移至离心管中。半贴壁半悬浮细胞需先收集悬液至离心管再参考贴壁细胞操作。

离心：收集好的细胞在1000rpm条件下离心3~5min，离心好后弃除上清液。

接种：准备好新的培养瓶并添加适量完全培养基，在离心管加入1-2mL完全培养基重悬吹打均匀，初次传代将细胞悬液按1:2比例接种到新的培养瓶中，后续可根据细胞实际情况按1:2-1:4的比例传代；接种完成后放入37℃、5%CO2细胞培养箱中培养。

悬浮细胞建议采用半换液传代：将培养瓶站立静置5-10min，肉眼可见细胞沉底，吸取1/2~2/3上清至离心管离心，将瓶内剩余悬液按1:2或1:3的比例转移至新的培养瓶，将离心管中的细胞重悬后放入培养瓶添加新鲜完全培养基即可。

【细胞冻存】

收集细胞参考细胞传代步骤。

冻存液重悬：细胞按照传代步骤收集细胞至离心管并计数，根据计数的密度决定细胞冻存数量，一般推荐细胞冻存密度为1×106-1×107个活细胞/管。离心后弃上清，加入配制好的冻存液重悬，分配到冻存管中，每管1mL。

冻存：将冻存管放入程序降温盒中进行梯度降温，然后放入-80℃冰箱降温，24h后将冻存管转入液氮罐中。若没有冻存盒，可于冰箱4℃放置30min，随后转移至-20℃冷冻2h，接下来将其放于-80℃超低温冰箱中过夜，最终放置于液氮中以长期保存。