当前位置: 首页 > 病理染色试剂 > 碳水化合物染色 > 糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)

SBJ-0413

糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)

规格 碳水染色
  • 英文名:
  • Glycogen D-PAS staining solution (amylase digestion method)
  • CAS号:
  • 分子式:
  • 品牌:
  • Sbjbio
  • 资料:
  • 暂未上传
  • MDL:
  • 储存条件:
  • 4℃,避光,6个月
产品编号 销售价促销价 库存 数量 单位 加入购物车
SBJ-0413-5×50ml ¥405.00元 ¥405.00元 准现货 EA 加入购物车
SBJ-0413-5×100ml ¥735.00元 ¥735.00元 准现货 EA 加入购物车

商品描述

文献引用

质检证书(COA)

相关商品

糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)说明书

【产品组成】

糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)是由淀粉酶溶液、过碘酸溶液、Schiff Reagent、Mayer苏木素染色液、酸性乙醇分化液组成。

【保存条件】

4℃,避光,6个月

【产品概述】

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色试剂盒不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中的1,2-乙二醇基,使之变为二醛,醛不Schiff试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质,使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间,使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化,这是很关键的步骤。PAS技术是唯一可检测不同种类的黏液物质(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法,但PAS技术却不能区别黏蛋白和糖原。若要冸确鉴别黏液物质(如黏蛋白或糖原),需加入糖原消化步骤。大多数情冴下可用α–淀粉酶或麦芽淀粉酶来催化糖原的糖苷键水解,形成水溶性的双糖-麦芽糖,在应用PAS技术之前将糖原从组织切片上除去。人类的唾液被认为是消化糖原的一种有效手段,但是出于安全以及缺乏标冸唾液的考虑,不主张应用唾液。

糖原D-PAS染色液的特点在于糖原PAS染色之前经淀粉酶处理,糖原消化时需要两张相同的切片,脱蜡后一张切片用含有淀粉酶的适当缓冲液处理,另一张仅用缓冲液处理。然后两张切片均用PAS法染色,消化后染色消失表明存在糖原。

【使用方法】

1、两张相同切片,二甲苯脱蜡,梯度乙醇入水。

2、一张切片入37℃淀粉酶溶液处理1h。另一张不用淀粉酶溶液处理,入水中1h作为对照。

3、流水冲洗两张切片各5~10min。

4、入过碘酸溶液,室温放置5~8min,一般不宜超过10min。

5、自来水冲洗1次,再用蒸馏水浸洗2次。

6、入Schiff Reagent,置于室温阴暗处浸染10~20min。

7、自来水冲洗10min。

8、入Mayer苏木素染色液,染细胞核1~2min。

9、(可选)酸性乙醇分化液分化2~5s。

10、自来水冲洗10~15min,更换蒸馏水清洗使其返蓝。

11、二甲苯透明,中性树胶封固。

【染色结果】

糖原、中性,唾液黏蛋白                            红紫色

各种糖蛋白                                                    红紫色

细胞核                                                            蓝色

未处理的切片,糖原呈亮红色或红紫色;淀粉酶处理的切片,糖原阴性。

【注意事项】

1、切片脱蜡应尽量干冷,否则影响染色效果。需使用一张阳性对照片验证酶的活性。

2、过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时温度以18~22℃最佳。

3、试剂(A)、试剂(B)、试剂(C)、应置于4℃密闭保存,使用时避免接触过多的阳光和空气,使用前最好提前取出恢复到在室温后,避光暗处使用。

4、酸性乙醇分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5、在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织类别等决定。

6、况冶切片染色时间尽量要短。